ReserveerReserveer
Onze gasten hebben ons beoordeeld met 9 Alle referenties bekijken
Datum en weer
0
Mijn winkelmandje
Er zit helemaal niks in jouw winkelmandje.
Vragen of hulp nodig bij je bestelling?
Neem contact met ons op via de website.

Virus resistentie bij extreme temperaturen

Er is heel wat over gezegd, het vervelende Corona virus dat de wereld teistert. Vaak maken wij er gasten op attent dat sauna gezond is en goed is om de weerstand tegen griep en verkoudheid flink te verhogen. Dat blijft natuurlijk een feit! Een fabel echter is dat sauna een virus zou kunnen doden, bacterieel is het wel aannemelijk dat de op land voorkomende bacteriën nooit bewezen hebben boven de 70 graden te overleven, een virus is echter ander verhaal.

Lezend in diverse wetenschappelijke onderzoeken kom ik tot de conclusie dat geen enkel virus hetzelfde is, echter dat er enorm veel virus aftakkingen zijn, dit omdat een gezonde drager een virus opsplitst en dus wisselwaar verzwakt, maar weldegelijk repliceert en vermenigvuldigt. Als ik een hele taart naar een groep mensen gooi, pakt iedereen een puntje mee zeg maar.

Warmte of kou heeft daar overigens blijkbaar weldegelijk invloed op. Er zijn virussen bekend die in extreme hoge temperaturen goed gedijen, virussen die dus ook in normale leef omstandigheden niet voorkomen, maar bijvoorbeeld in diep zee uitbarstingen vulkanisch ontstaan.  Andersom vaak ook, is de oorsprong van een virus bij een normale temperatuur, dan zal verhitting snel leiden tot afname van virale replicatie. Overigens weten we sinds enkele jaren dat de oorsprong van het leven te maken zou hebben met de virologie en kunnen we niet langer suggereren dat virussen slechts besmettelijke fragmenten uit het leven zijn, maar een van de belangrijkste componenten in de biosfeer.

Terug naar sauna. Een virus kan dus sterker worden in hoge temperaturen? Ja, maar dus niet die virussen die wij kennen. Sauna is dus niet een virus versterker in elk geval. In tegendeel!

Poliovirus type 1 kan worden geïnactiveerd door behandeling bij 75 graden gedurende 1 uur, HepatitisA wordt volledig geïnactiveerd bij een temperatuur van 100graden celsius, gedurende 2 minuten terwijl het coxsackievirus B3 al na 2 minuten in 55 graden wordt vernietigd. Doorgaans is dat met een relatief lage luchtvochtigheid, al zijn de meeste virussen eerder geremd door vochtige warmte boven de 75 graden (waarbij je dus je huid zou verbranden) dan bij droge lucht van 95 graden welke je kunt verdragen.

Helaas zijn er ook virussen, zoals BPV waarbij vochtigheid juist het virus resistent maakt tegen hitte. Deze virussen zijn vermoedelijk in een vochtige omgeving ontstaan. Zo kennen we zelfs virussen uit de streek rondom de Dode zee, met een magnesium gehalte van boven de 50%, waar je normaliter door het zout zou zeggen dat het alles kapot maakt, echter dit virus juist leeft van zout en extreme hitte. Geen paniek, kalm aan, het virus komt pas tot leven boven de 85 graden! Dit virus is niet resistent in de normale wereld, dus slapend…

Dat slapen, dat doen de meeste virussen trouwens wanneer deze onderkoeld raken. De hoogste explosiviteit van virussen is gemeten in het water onder de Antartische ijszee. Daar waar een virus zich meestal tweezijdig opsplitst, versterkt het virus zich daar en vermenigvuldigt soms wel tienvoudig! Ook dit zijn extreme vormen van virussen die diep onder de zeespiegel bevinden, dus ook daarbij geen zorgen.

Dan nog iets. Een voor ons mensen relevant virus, resistent in onze atmosfeer en in onze samenleving wordt in principe als een zwak fenomeen beschouwd. Het heeft namelijk een gezonde en sterke drager nodig om virale replicatie te kunnen veroorzaken en “viraal te gaan”! Met ons hedendaagse reisgedrag echter, wordt elk virus een beetje enger, zo ook bij het nu zo vervelende Corona virus, maar ook SARS en de Mexicaanse griep. We brengen nogal wat heen en weer op deze aarde en bij een zwakkere drager is het gevolg niet te overzien.

Wat is dan de onze conclusie uit die onderzoeken?

A – sauna blijkt niet bewezen een oplossing, noch een probleem te vormen voor virussen

B – sauna vergroot weldegelijk de weerstand tegen griep virussen

C – de virussen die leven in onze samenleving zijn over het algemeen zwak en door de opsplitsing verzwakken ze erg snel

D – hitte en kou hebben geen of nauwelijks effect op een virus, achter bij extreem hoge temperaturen rem je het virale weldegelijk af

Slot conclusie betreffende Corona: willen we zekerheid, dan zullen we heel veel en heel lang moeten testen. Tot die tijd, volg de instructies voor de zekerheid. Is het niet voor je eigen gezondheid, dan wel tegen verspreiding zodat de minder gezonde mensen wat langer bij ons kunnen blijven.

 

Het hele onderzoek lezen? Kijk in de bijlagen!

 

Met complimenten van de studenten Microbiologie en Biochemische wetenschappen van Wageningen Universiteit

 

References

1. Anonymous (2005) Leitlinie der Deutschen Vereinigung zur

Beka¨mpfung der Viruskrankheiten e.V. und des Robert Koch-

Instituts zur Pru¨fung von chemischen Desinfektionsmitteln auf

Wirksamkeit gegen Viren in der Humanmedizin, Fassung vom

15. Juni 2005. Bundesgesundheitsbl Gesundheitsforsch Gesundheitsschutz

48:1420–1426

2. Blu¨mel J, Schmidt I, Willkommen H, Lo¨wer J (2002) Inactivation

of parvovirus B19 during pasteurization of human serum albumin.

Transfusion 42:1011–1018

3. Bra¨uninger S, Fischer I, Peters J (1994) The temperature stability

of bovine parvovirus. Zentralbl Hyg Umweltmed 196:270–278

4. Bra¨uninger S, Peters S, Borchers U, Kao M (2000) Further

studies on thermal resistance of bovine parvovirus against most

and dry heat. Int J Hyg Environ Health 203:71–75

5. Croci L, Ciccozzi M, De Medici D, Di Pasquale S, Fiore A, Mele

A, Toti L (1999) Inactivation of hepatitis A virus in heat-treated

mussels. J Appl Microbiol 87:884–888

6. Gantzer C, Levi Y, Schwartzbrod L (1996) Effect of heat on the

survival of infectious coxsackievirus B3 and its genome in water.

Zentralbl Hyg Umweltmed 199:76–83

7. Kamolsiripichaiporn S, Subharat S, Udon R, Thongtha P,

Nuanualsuwan S (2007) Thermal inactivation of foot-and-mouth

disease viruses in suspension. Appl Environ Microbiol 73:7177–

7184

8. Mani B, Gerber M, Lieby P, Bosschetti N, Kempf C, Ros C

(2007) Molecular mechanism underlying B19 virus inactivation

and comparison to other parvovirus. Transfusion 47:1765–1774

9. Middleton JK, Agosto MA, Severson TF, Yin J, Nibert ML

(2007) Thermostabilizing mutations in reovirus outer-capsid

protein mu1 selected by heat inactivation of infectious subvirion

particles. Virology 361:412–425

10. Ng PK, Dobkin MB (1985) Pasteurization of antihemophilic

factor and model virus inactivation studies. Thrombosis Res

39:439–447

11. Prikod‘ko GG, Vasilyeva I, Reyes H, Wong S, Brown KE,

Jameson T, Busby TF (2005) Evaluation of a new LightCycler

reverse transcription-polymerase chain reaction infectivity assay

for detection of human parvovirus B19 in dry-heat inactivation

studies. Transfusion 45:1011–1019

12. Roberts PL, Hart H (2000) Comparison of the inactivation of

canine and bovine parvovirus by freeze–drying and dry-heat

treatment in two high purity factor VIII concentrates. Biologicals

28:185–188

13. Sattar SA (2004) Microbicides and the environmental control of

nosocomial infections. J Hosp Infect 56(Suppl 2):S64–S69

14. Sattar SA, Adegbunrin O, Ramirez J (2002) Combined application

of simulated reuse and quantitative carrier test to assess

high-level disinfection: experiments with an accelerated

hydrogen peroxide-based formulation. Am J Infect Control

30:449–457

15. Shiomi H, Urasawa T, Urasawa S, Kobayashi N, Abe S,

Taniguchi K (2004) Isolation and characterisation of poliovirus

mutants resistant to heating at 50 degrees Celsius for 30 min. J

Med Virol 74:484–491

16. von Rheinbnaben F, Wolff MH (2002) Handbuch der viruswirksamen

Desinfektion. Springer, Berlin

17. Wright SA, Bieluch VM (1993) Selected nosocomial viral

infections. Heart Lung 22:183–187

18. Wutzler P, Sauerbrei A (2004) Virucidal activity of the new

disinfectant monopercitric acid. Lett Appl Microbiol 39:194–198

 

En

 

References

Ahn DG, Kim SI, Rhee JK, Kim KP, Oh JW (2004)

TTSV1, a novel globuloviridae family virus isolated

from the hyperthermophilic crenarchaeote Thermoproteus

tenax. GenBank Accession: NC_00655

Arnold HP, Zillig W, Ziese U, Holz I, Crosby M, Utterback

T, Weidmann JF, Kristjansson JK, Klenk HP,

Nelson KE, Fraser CM (2000a) A novel lipothrixvirus,

SIFV, of the extremely thermophilic crenarchaeon

Sulfolobus. Virology 267:252–266

Arnold HP, Ziese U, Zillig W (2000b) SNDV, a novel

virus of the extremely thermohpilic and acidophilic

archaeon Sulfolobus. Virology 272:409–416

Bamford DH (2003) Do viruses form lineage across different

domains of life? Res Microbiol 154:231–236

Bamford DH, Ravantti JJ, Ro¨nnholm G, Laurinavicius S,

Kukkaro P, Dyall-Smith M, Somerharju P, Kalkkinen

N, Bamford JKH (2005) Constituents of SH1, a novel

lipid-containing virus infecting the halophilic auryarchaeon

Haloarcula hispanica. J Virol 79(14):9097–

9107

Bath C, Dyall-Smith ML (1998) His1, an archaeal virus of

the Fuselloviridae family that infects Haloarcula

hispanica. J Virol 72:9392–9395

Bath C, Cukalac T, Porter K, Dyall-Smith ML (2006) His1

and His2 are distantly related, spindle-shaped haloviruses

belonging to the novel virus group, Salterprovirus.

Virology 350:228–239

Bettstetter M, Peng X, Garrett RA, Prangishvili D (2003)

AFV1, a novel virus infecting hyperthermophilic

archaea of the genus Acidianus. Virology 315:68–79

Bird DF, Juniper SK, Ricciardi-Rigault M, Martineu P,

Prairie YT, Calvert SE (2001) Subsurface viruses and

bacteria in Holocene/Late Pleistocene sediments of

Saanich Inlet, BC: ODP Holes 1033B and 1034B, Leg

169S. Mar Geol 174:227–239

Rev Environ Sci Biotechnol (2007) 6:17–31 29

123

Borriss M, Helmke E, Hanschke R, Schweder T (2003)

Isolation and characterization of marine psychrophilic

phage–host systems from Arctic sea ice. Extremophiles

7:377–384

Breibart M, Rohwer F (2005) Here a virus, there a virus,

everywhere the same virus? Trends Microbiol 13:278–

284

Breitbart M, Wegley L, Leeds S, Schoenfeld T, Rohwer F

(2004) Phage community dynamics in hot springs.

Appl Environ Microbiol 70:1633–1640

Bulat S, Alekhina IA, Blot M, Petit JR, de Angelis M,

Wagenbach D, Lipenkov VY, Vasilyeva L, Wloch D,

Raynaud D, Lukin VV (2004) DNA signature of

thermophilic bacteria from the aged accretion ice of

Lake Vostok: implications for searching life in extreme

icy environments. Int J Astrobiol 1:1–12

Dyall-Smith M, Tang SL, Bath C (2003) Haloarchaeal

viruses: how diverse are they? Res Microbiol 154:309–

313

Edwards RA, Rohwer F (2005) Viral metagenomics. Nat

Rev Microbiol 3:504–510

Evans RD, Johansen JR (1999) Microbiotic crusts and

ecosystem processes. Cri Rev Pl Sci 18:182–225

Forterre P (2006) Three RNA cells for ribosomal lineages

and three DNa viruses to replicate their genomes: a

hypothesis for the origin of cellular domain. Proc Natl

Acad Sci USA 103:3669–3674

Fuhrman JA (1999) Marine viruses and their biogeochemical

and ecological effects. Nature 399:541–548

Geslin C, Le Romancer M, Gaillard M, Erauso G, Prieur

D (2003a) Observation of virus-like particles in high

temperature enrichment cultures from deep-sea

hydrothermal vents. Res Microbiol 154:303–307

Geslin C, Le Romancer M, Erauso G, Gaillard M, Perrot

G, Prieur D (2003b) PAV1, the first virus-like particle

isolated from a hyperthermophilic euryarchaeote,

‘‘Pyrococcus abyssi’’. J Bacteriol 185:3888–3894

Gowing MM (2003) Large viruses and infected microeukaryotes

in Ross Sea summer pack ice habitats.

Mar Biol 142:1029–1040

Gropp F, Palm P, Zillig W (1989) Expression and regulation

of Halobacterium halobium phage /H genes. Can

J Microbiol 35:182–188

Grossi SM, Kottmeier S, Sullivan CW (1984) Sea ice

microbial communities. III. Seasonal abundance of

microalgae and associated bacteria, McMurdo Sound,

Antarctica. Microb Ecol 10:231–242

Guixa-Boixareu N, Calderon-Paz JI, Heldal M, Bratbak

G, Pedros-Alio C (1996) Viral lysis and bacterivory as

prokaryotic loss factors along a salinity gradient.

Aquat Microb Ecol 11:215–227

Ha¨ring M, Peng X, Bru¨ gger K, Rachel R, Stetter KO,

Garrett RA, Prangishvili D (2004) Morphology and

genome organization of the virus PSV of the hyperthermophilic

archaeal genera Pyrobaculum and

Thermoproteus: a novel virus family, the Globuloviridae.

Virology 323:233–242

Ha¨ring M, Vestergaard G, Rachel R, Chen L, Garrett RA,

Prangishvili D (2005a) Independent virus development

outside a host. Nature 436:1101–1102

Ha¨ring M, Rachel R, Peng X, Garrett RA, Prangishvili

D (2005b) Viral diversity in hot springs of Puzzoli,

Italy and characterization of a unique archaeal

virus, Acidianus bottle-shaped virus, from a new

family, the Ampullaviridae. J Virol 79(15):9904–

9911

Ha¨ring M, Vestergaard G, Bru¨ gger K, Rachel R, Garrett

RA, Prangishvili D (2005c) Structure and genome

organization of AFV2, a novel archaeal Lipothrixvirus

with unusual terminal and core structures. J Bact

187(11):3855–3858

Janekovic D, Wunderl S, Holz I, Zillig W, Gierl A, Neumann

H (1983) TTV1, TTV2 and TTV3, a family of

viruses of the extremely thermophilic, anaerobic sulfur

reducing archaebacterium Thermoproteus tenax.

Mol Gen Genet 192:39–45

Jiang S, Steward G, Jellison R, Chu W, Choi S (2004)

Abundance, distribution and diversity of viruses in

alkaline hypersaline Mono Lake, California. Microb

Ecol 47:9–17

Khayat R, Tang L, Larson ET, Lawrence CM, Young M,

Johnson JE (2005) Structure of an archaeal virus

capsid protein reveals a common ancestry to eukaryotic

and bacterial viruses. Proc Natl Acad Sci USA

102:1894–1899

Kepner RL, Wharton RA Jr, Suttle CA (1998) Viruses in

Antarctic lakes. Limnol Oceanogr 43:1754–1761

Klein R, Baranyi U, Ro¨ ssler N, Greineder B, Scholz H,

Witte A (2002) Natrialba magadii virus /Ch1: first

complete nucleotide sequence and functional organization

of a virus infecting a haloalkalophilic archaeon.

Mol Microbiol 45:851–863

Kottmeier ST, Grossi SM, Sullivan CW (1987) Sea ice

microbial communities. VII. Bacterial production in

annual sea ice of Mc Murdo Sound, Antartica. Mar

Ecol Prog Ser 35:175–186

Madigan MT, Martinko JM, Parker J (2003) Extremely

halophilic Archaea. In: Carlson G, Snavely SL,

Wechsler DA, Schiaparelli K (eds) Brock biology of

microorganisms, 10th edn. Prentice Hall, USA, pp

448–452

Maranger R, Bird DF, Juniper SK (1994) Viral and

bacterial dynamics in Arctic sea ice during the spring

algal bloom near Resolute, N.W.T., Canada. Mar Ecol

Prog Ser 111:121–127

Martin A, Yeats S, Janekovic D, Reiter W-D, Aicher W,

Zillig W (1984) SAV1, a temperate u.-v. inducible

DNA virus-like particle from the archaebacterium

Sulfolobus acidocaldarius isolate B12. EMBO J

3(9):2165–2168

Nuttall SD, Dyall-Smith ML (1993) HF1 and HF2: novel

bacteriophages of halophilic archaea. Virology

197(2):678–684

Oren A, Bratbak G, Heldal M (1997) Occurrence of viruslike

particles in the Dead Sea. Extremophiles 1:143–

149

Ortmann AC, Suttle CA (2005) High abundances of

viruses in deep-sea hydrothermal vent system indicate

viral mediated microbial mortality. Deep-sea Res I

52:1515–1527

30 Rev Environ Sci Biotechnol (2007) 6:17–31

123

Palm P, Schleper C, Grampp B, Yeats S, McWilliam P,

Reiter W-D, Zillig W (1991) Complete nucleotide

sequence of the virus SSV1 of the archaebacterium

Sulfolobus shibatae. Virology 185:242–250

Parkes RJ, Cragg BA, Bale SJ, Getliff JM, Goodman K,

Rochelle PA, Fry JC, We

Advies of informatie

Wilt u rechtstreeks en per mail informatie vragen aan onze receptioniste, of een opmerking plaatsen, vult u dan het onderstaande formulier in of bel met 0318-520321

Wij nemen zo spoedig mogelijk contact met u op!

* Velden met een * zijn verplicht
Nieuwsbrief

Wilt u niets missen? Blijf op de hoogte van de nieuwe acties, de
laatste arrangementen en de scherpste aanbiedingen